EXTRACCIÓN Y PURIFICACIÓN DE PROTEÍNAS CON NANOPARTÍCULAS
MAGNÉTICAS ESTABILIZADAS CON SISTEMAS DENDRÍTICOS CARBOSILANO
La presente invención se refiere a la extracción o purificación de proteínas utilizando nanopartículas magnéticas (NPM) de óxido de hierro (preferentemente magnetita; Fe3O4) , recubiertas en su superficie con moléculas dendríticas de estructura carbosilano, que a su vez están funcionalizadas en su periferia con grupos activos que preferiblemente están en forma aniónica. Esta extracción se lleva a cabo en medio acuoso sin utilizar disolventes orgánicos. La presente invención también se refiere al procedimiento de reutilización de las NPM para dicho uso.
ESTADO DE LA TÉCNICA ANTERIOR
La purificación/extracción de proteínas es una etapa tediosa que habitualmente requiere la utilización de reactivos y disolventes contaminantes y no reutilizables que, en definitiva, no son sostenibles (Wu, X., et al. Pmteomics 2014, 14, 645) . Como consecuencia de este hecho, es importante el desarrollo de estrategias alternativas a los métodos habitualmente empleados que utilicen, por ejemplo, agua como medio de extracción.
Las nanopartículas magnéticas (NPM) han atraído gran atención por su gran relación superficie/volumen y por poder ser separadas o guiadas por un campo magnético externo (Akbarzadeh, A. et al. Nanoscale Research Letters 2012, 7, 144) . Entre ellas, las formadas por óxidos de hierro (magnetita, Fe3O4; maghemita, Fe2O3) destacan por su biocompatibilidad. Sin embargo, su aplicabilidad en un determinado campo requiere de una adecuada funcionalización. Además, el recubrimiento de la superficie puede favorecer su dispersión en estado líquido y, por tanto, su utilización. Entre sus aplicaciones se pueden destacar la bioseparación, la detección molecular o la concentración de analitos (Oksvold, M. P. et al. Methods Mol Biol 2015, 1218, 465) . Las NPM recubiertas con diferentes ligandos han sido empleadas en la purificación de distintas enzimas y proteínas (Farzi-Khajeh, H. y col. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces 2019, 175, 644; Cimen, D. y col., Separation Science and Technology 2020, 55, 2259; Xu, J. y col. Molecules 2014, 19, 11465; Gu, H. y col. Chemical Communications, 2006, 9, 941; Nicolás, P. y col. Journal of Food Engineering, 2019, 263, 380) . En la mayor parte de estos trabajos, no se ha comprobado la validez de la plicación de las NPM con muestras reales sino con proteínas patrón. Además, en ninguno de estos trabajos se ha evaluado la posibilidad de reutilización de estos materiales.
Un tipo de moléculas que se ha utilizado recientemente para estabilizar NP, y que además tiene un atractivo específico para aplicaciones biomédicas, son las moléculas dendríticas (MD) (Newkome, G. R.; Shreiner, C. D. Polymer 2008, 49, 1) . Las MD, dendrímeros y dendrones, son moléculas hiperramificadas de construcción arborescente, de tamaño y estructura tridimensional bien definidos y que poseen unas propiedades químicas uniformes debidas, en parte, a su baja polidispersidad como consecuencia de su síntesis controlada. Los dendrímeros y dendrones de mayores generaciones presentan una topología molecular esférica. En ambos casos, su superficie contiene los grupos activos de estas moléculas. Además, en el caso de los dendrones, éstos presentan una posición adicional denominada punto focal, que puede servir para introducir una nueva función activa o como anclaje a otros sistemas, como por ejemplo una NP.
Las MD o sistemas modificados con ellas pueden interaccionar con distintas biomacromoléculas. Esta interacción dependerá del tipo de función que presenten las MD en su periferia y está relacionada con la multivalencia de las mismas, ya que presentan un número elevado de funcionalidades sobre una misma molécula. Por ejemplo, sistemas dendríticos con grupos aniónicos o catiónicos interaccionan con péptidos o proteínas en función de la carga del sistema dendrítico y del punto isoeléctrico de la proteína. Además, esta capacidad se mantiene si estos sistemas dendríticos se incorporan a NP de oro (Vásquez-Villanueva, R. et al. Microchimica Acta 2019, 186, 508) . Este tipo de sistemas se han ensayado para la extracción de proteínas y son capaces de interaccionar selectivamente con algunas proteínas en función de la carga y tamaño de estas. Desafortunadamente, la separación del medio de estos conjugados MD-proteína no resulta fácil por tener comportamientos similares a las proteínas libres.
En este sentido, si la funcionalización con MD se realizara sobre NPM, se podría plantear que la interacción específica de estas NPM modificadas (NPM-MD) con determinadas proteínas permitiría, por una parte, la concentración de estas sobre las NPM-MD, y por otra, la aplicación de un campo magnético que retiraría el sistema NPM-MD-proteína del medio separándolo de otras moléculas. Por ejemplo, los sistemas NPM-MD se han mostrado útiles para interaccionar con virus en un medio biológico que los contiene (Barrios-Gumiel, A. et al. Colloids Suri. B 2019, 181, 360) . La separación de dichas NPM-MD del medio mostraba que la infectividad de la muestra se reducía. Sin embargo, se ha comprobado que las condiciones empleadas para que tuviera lugar la interacción de las NPM-MD con el virus no son adecuadas en el caso de las proteínas y, además, en aquel trabajo no era posible la reutilización de las NPM-MD donde quedaba retenido el virus.
Finalmente, si una vez separado este nanoconjugado NPM-MD-proteína, es posible romper esta interacción y separar las NPM-MD de las proteínas, estaríamos ante un sistema muy atractivo frente a las metodologías empleadas en la actualidad, tanto a escala laboratorio como a escala industrial, para la extracción/purificación de proteínas. La utilización de las NPM-MD en la recuperación/purificación de proteínas se convertiría en un proceso mucho más sencillo ahorrando tiempo y disolventes y haciéndolo más sostenible desde el punto de vista medioambiental.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención proporciona un método de separación de proteínas y péptidos utilizando nanopartículas magnéticas (NPM) de óxido de hierro, preferentemente de magnetita (Fe3O4) , pero sin descartar otros como maghemita (Fe2O3) . Estas NPM están recubiertas de moléculas dendríticas (MD) de estructura carbosilano que están funcionalizados en su periferia con grupos aniónicos (por ejemplo, como carboxilato, sulfonato o fosfato) , catiónicos (grupos amonio) o neutros (grupos carboxílicos, sulfónicos y amino) (Figuras 1-4) . Este tipo de NPM-MD corresponden con las que se encuentran ya descritas en Barrios-Gumiel, A. et al. Colloids Surf. B 2019, 181, 360; o en la solicitud de patente española ES2830873A1 (Figura 5) .
Por tanto, un primer aspecto de la presente invención se refiere a una NPM-MD (a partir de ahora compuesto de la invención) que comprende:
-Un núcleo compuesto por óxido de hierro, preferentemente magnetita (Fe3O4) de tamaño nanoscópico. Este núcleo puede tener una disposición de sus átomos esférica, cilíndrica, de prisma u otras, con al menos una dimensión entre 1 y 1000 nm.
-La superficie de la NPM está a su vez recubierta por al menos una molécula dendrítica (MD) . Por "molécula dendrítica" se refiere en la presente invención a una macromolécula muy ramificada donde las unidades, ramas o ramificaciones de crecimiento tienen esqueleto carbosilano y esta molécula dendrítica está funcionalizada en su capa externa con grupos aniónicos seleccionados de grupos carboxilato o ulfonatos, con grupo catiónicos seleccionados de grupo amonio o con grupos neutros seleccionados de grupos carboxílicos, sulfónicos y amino y que comprende una cadena anclante de fórmula -Si- (CH2) b-R1- (CH2) a- donde:
la molécula dendrítica está unida al núcleo por el átomo de Si, a es un número entero que varía entre 0 a 10;
b es un número entero que varía de 1 a 10, preferiblemente varían de 1 a 5; y
R1 se selecciona de entre un grupo urea, carbamato, tiocarbamato, tiourea o un grupo triazol, preferentemente es un grupo urea.
Este compuesto dendrítico es preferentemente un dendrón (Figuras 1 y 3) , también denominado este último como cuña dendrítica, que se refiere a una macromolécula muy ramificada con forma de cono y que está definida por un punto focal, las unidades, ramas o ramificaciones de crecimiento, que parten de dicho punto focal y la capa externa, superficie o periferia de dichas ramificaciones, que incorpora grupos funcionales, y donde:
-el punto focal del dendrón es la cadena anclante de fórmula -Si- (CH2) b-R1- (CH2) a-donde: el dendrón está unido al núcleo por el átomo de Si, a es un número entero que varía entre 1 a 10, preferiblemente entre 1 y 5; y b y R1 están definidos en la anteriormente; y
-la capa externa del dendrón consiste en unidades iguales o diferentes del grupo de fórmula (I) :
donde: R2 es un grupo alquilo (C1-C4) , preferiblemente R2 es un grupo metilo;
p es un número entero y varía entre 1 y 3, preferiblemente p es 2;
R3 es el siguiente grupo - (CH2) c-S- (CH2) d-R4 ;
c representa un número entero que varía de 2 a 5; preferiblemente c es 2 ó 3; d representa un número entero que varía de 1 a 10; preferiblemente d varía entre 1 y 5; y
R4 se selecciona de entre -NRR, -NRRR, -COOR, -COO' , -SO3R y -SO3-, donde R, R y R representan de manera independiente un grupo alquilo (C1-C4) o un hidrógeno. Preferiblemente, R4 es un grupo -CO 2-, un grupo -CO 2H o un grupo -NMe3+; y más preferiblemente c es 2 o 3 y aún más preferiblemente d es 1 o 2.
Cuando este compuesto dendrítico es preferentemente un dendrímero carbosilano, este dendrímero se encuentra heterofuncionalizado (ver por ejemplo WO 2014016460) y consiste en una capa externa, que presenta unidades iguales o diferentes del grupo de fórmula (II) :
donde: R2 es un grupo alquilo (C1-C4) , preferiblemente R2 es un grupo metilo;
p es un número entero y varía entre 1 y 3, preferiblemente p es 2;
R5 es el grupo - (CH2) c-S- (CH2) d-R6;
c representa un número entero que varía de 2 a 5; preferiblemente c es 2 ó 3;
d representa un número entero que varía de 1 a 10; preferiblemente d varía entre 1 y 5; R6 se selecciona de entre -NRR, -NRRR, -COOR, -COO- , -SO3R y -SO3-, donde R, R y R representan de manera independiente un grupo alquilo (C1-C4) o un hidrógeno, y con la condición que al menos un grupo R6 de la capa externa del dendrímero consiste en la cadena anclante de fórmula -Si- (CH2) b-R1- (CH2) a- donde el dendrímero está unido al núcleo por el átomo de Si, y a, b y R1 están definidos anteriormente. Preferiblemente, R6 es un grupo -CO 2", un grupo-CO2H, o un grupo -NMe3+, más preferiblemente c es 2 o 3 y aún más preferiblemente d es 1 o 2. Por lo tanto, este átomo de silicio presente en dicha cadena es el que ancla el dendrímero a la superficie de la NPM.
El término "alquilo" se refiere en la presente invención a cadenas alifáticas, lineales o ramificadas, que tienen de 1 a 4 átomos de carbono, por ejemplo, metilo, etilo, n-propilo, i-propilo, n-butilo, tert-butilo o sec-butilo, preferiblemente tiene de 1 a 2 átomos de carbono, más preferiblemente el grupo alquilo es un metilo o un etilo.
El compuesto de la presente invención es preferiblemente aniónico, por ejemplo formado R4 o R6 por grupos carboxilato (-CO2") . Por lo tanto, la presente invención no solo incluye los compuestos por sí mismos, sino cualquiera de sus sales. Preferiblemente las sales son de sodio o potasio.
Cuando el compuesto de la presente invención es preferiblemente catiónico, formado R4 o R6 por grupos amonio (por ejemplo -NH3+ o -NMe3+) , la presente invención no solo incluye los compuestos por sí mismos, sino cualquiera de sus sales. Preferiblemente las sales son de halogenuro, que se pueden seleccionar entre sales de cloruro, bromuro, oduro; u otro tipo de aniones como triflato. Preferiblemente las sales son de ioduro y cloruro.
Un segundo aspecto de la presente invención incluye la extracción de las proteínas, que se lleva a cabo utilizando agua preferentemente, de manera que se evita el uso de disolventes orgánicos. Además, la presente invención también describe la reutilización de las NPM-MD.
Las NPM-MD (preferentemente de segunda generación, figura 5) se dispersan en agua y se ponen en contacto durante un tiempo determinado, preferentemente de entre 1 minuto y 120 minutos, más preferentemente unos pocos minutos, con las proteínas que se quieren extraer/purificar en condiciones de pH determinado, preferentemente pH ácido, más preferentemente a pH de entre 1, 5 y 5, y aún más preferentemente a pH 1, 8, utilizando preferentemente una proporción NPM-MD:proteína comprendida entre 1:1 y 1:1000, que dependerá del tamaño de las proteínas a extraer/purificar (Figura 6) . Por ejemplo, este método se ha empleado con diferentes proteínas modelo (ej. lisozima, mioglobina, concanavalina, seroalbúmina bovina) , sin descartar otras.
A continuación, se utiliza un campo magnético externo, por ejemplo un imán, para separar las NPM-MD con las proteínas retenidas del resto de la disolución. El imán se mantendrá en contacto con la disolución durante un tiempo adecuado, preferentemente durante un tiempo de entre 1 y 120 minutos. Finalmente, el conjugado NPM-MD-proteína se lava con agua.
Además, la presente invención también se refiere a la liberación de las proteínas o péptidos del conjugado formado con las NPM-MD, tal que se obtiene por un lado la biomacromolécula y por otro el sistema NPM-MD. Para ello, se probaron diferentes medios. A continuación, se indican estos medios y algunas condiciones, pero sin descartar otros: urea 1 M, NaOH 0, 1 M, 0, 2% de ácido trifluoroacético, 0, 2% de dodecilsulfato de sodio (SDS) a temperatura ambiente y a 100° C y agua a 100° C. La Figura 7 muestra los perfiles obtenidos por electroforesis en gel de poliacrilamida con dodecilfulfato (SDS, SDS-PAGE) correspondientes a las proteínas que se liberaban de las NPM-MD tras el tratamiento del complejo formado con las proteínas con los medios y condiciones anteriormente citadas. Otros medios alquil o aril sulfonatos, o sulfatos pueden emplearse, sin descartar otros.
Por tanto, en una realización preferida la liberación de las proteínas o péptidos del conjugado formado con las NPM-MD se lleva a cabo en un medio seleccionado de entre urea, NaOH, ácido trifluoroacético, dodecilsulfato de sodio a una temperatura de entre 18°C y 100° C, agua a aproximadamente 100° C, alquil C4-C20 o aril sulfonatos, o sulfatos.
La presente invención también muestra que la utilización del sistema NPM-MD obtenido después de liberar la proteína puede volver a ser empleado en la extracción de nuevas muestras de biomacromoléculas (Figura 8) , aspecto que no se observa cuando se emplean NPM no recubiertas con MD.
Por "biomacromoléculas" se refiere en la presente invención a proteínas o péptidos, preferentemente proteínas, pero sin descartar otros sistemas formados por unión de aminoácidos.
A lo largo de la descripción y las reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no pretenden excluir otras características técnicas, aditivos, componentes o pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos, ventajas y características de la invención se desprenderán en parte de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Los siguientes ejemplos y figuras se proporcionan a modo de ilustración, y no se pretende que sean limitativos de la presente invención.
DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1. Representación de una cuña carbosilano catiónica de segunda generación (EtO) 3SiG2 (CO2-) 4 (R4 = CO2-, p = 4, n = 2, R7 = Et) .
Figura 2. Representación de un dendrímero carbosilano catiónico de primera generación (EtO) 3SiG1 (CO2-) 7 (R6 = CO2-, p = 7, n = 1, R7 = Et) .
Figura 3. Representación de una cuña carbosilano catiónica de segunda generación (EtO) 3SiG2 (NMe3+) 4 (R4 = NMe3+, p = 4, n = 2, R7 = Et) .
Figura 4. Representación de un dendrímero carbosilano catiónico de primera generación (EtO) 3SiG1 (NMe3+) 7 (R6 = NMe3+, p = 7, n = 1, R7 = Et) .
Figura 5. Ejemplos de NPM-MD, que constan de un núcleo de magnetita Fe3O4 y ubiertas de dendrones carbosilano de 2a generación con funciones ácido carboxílico (Figura 1 arriba) o amonio (Figura 1 abajo) .
Figura 6. Porcentaje de proteínas retenidas sobre NPM-MD (MD de 2a generación con grupos carboxilato) a diferentes proporciones NPM-MD:proteína (desde 100:1 a 1000:1) .
Figura 7. Perfiles obtenidos por SDS-PAGE correspondientes a disoluciones (blanks) que contenían lisozima (LYS) , mioglobina (MYO) , concanavalina (CONC) o seroalbúmina bovina (BSA) y a disoluciones que contenían las proteínas eluídas de las NPM-MD (de 2a generación con grupos carboxilato) utilizando diferentes medios y condiciones: NaCl 1 M, urea 1 M, 0.2% de NaOH, 0.2% de SDS a temperatura ambiente y a 100 °C y agua a 100 °C.
Figura 8. Porcentaje de las proteínas lisozima (LYS) , mioglobina (MYO) , concanavalina (CONC) y seroalbúmina bovina (BSA) retenidas en NPM-MD (de 2a generación con grupos carboxilato) en tres experimentos consecutivos.
Figura 9. Perfil de SDS-PAGE correspondiente a las proteínas del hueso de aceituna sin tratar (extract) y a las que quedan en disolución tras el tratamiento con las NPM-MD (de 2a generación con grupos carboxilato) a diferentes proporciones NPM:proteína (1:1, 5:1, 10:1 y 25:1) o mediante precipitación con acetona.
Figura 10. Separación de proteínas obtenida por cromatografía de líquidos de alta eficacia en fase inversa a partir de un suero de queso sin tratar (whey protein) y tras su tratamiento con NPM-MD (2a generación con grupos carboxilato) a diferentes proporciones NPM-MD:proteína.
EJEMPLOS
A continuación, se describen los procedimientos para la purificación de algunas de las proteínas descritas en esta invención, sin descartar otros posibles.
Ejemplo 1.- Purificación de proteínas de hueso de aceituna con NPM-MD
Se propone la utilización de las NPM-MD para la purificación de proteínas extraídas a partir de un subproducto de la industria del olivo, el hueso de aceituna, como alternativa a n método convencional para la purificación de proteínas que consiste en la precipitación de las mismas utilizando un disolvente orgánico como la acetona o el etanol. El extracto de proteínas de los huesos de aceituna se obtiene utilizando el método descrito en la patente ES2487115B1. Brevemente, el hueso de la aceituna se deja secar a temperatura ambiente y se extrae del mismo la semilla mediante fractura por procedimientos mecánicos. Una vez extraída la semilla de la aceituna esta se tritura en un molinillo. Las proteínas de la semilla se extraen empleando un medio de extracción formado por un tampón Tris-HCl 125 mM (pH 7, 5) que contiene dodecilsulfato de sodio y ditiotreitol. En estas condiciones las proteínas pasan a la disolución acuosa y el residuo sólido se elimina mediante centrifugación. Las proteínas extraídas se purifican mediante su precipitación con acetona durante 24 h a 4° C seguido de centrifugación. Alternativamente, se realiza la purificación de las proteínas extraídas utilizando las NPM-MD a pH ácido, preferentemente entre 1, 5 y 5; utilizando diferentes relaciones NPM-MD:proteína. Estas NPM-MD son como las que se encuentran descritas en Barrios-Gumiel, A. et al. Colloids Suri. B 2019, 181, 360 (NPM cubiertas de dendrones carbosilano preferentemente de segunda generación con funciones carboxilo, Figura 5 arriba) o en la solicitud de patente española ES2830873A1 (NPM cubiertas de dendrones carbosilano preferentemente de segunda generación con funciones amonio, Figura 5 abajo) .
La Figura 9 muestra la separación de las proteínas que han quedado en los extractos tras su tratamiento con las NPM-MD, modificada preferentemente con dendrones de segunda generación con grupos carboxílico o bien modificada preferentemente con dendrones de segunda generación con grupos amonio, a diferentes relaciones NPM-MD:proteína o tras su precipitación con acetona. Cuando se emplea una relación NPM-MD:proteína de 25:1 es posible la retención de todas las proteínas del extracto no quedando ninguna en el mismo. Esto mismo se observa también cuando se realiza la precipitación de las proteínas con acetona, aunque en este caso es necesario un tiempo mayor para la purificación de las proteínas (24 h) , así como la utilización de un disolvente orgánico como la acetona o el etanol.
A continuación, en los casos en los que se han empleado las NPM-MD, se ponen las disoluciones en contacto con un imán durante un tiempo adecuado (unos 10 min) que permite la separación del complejo NPM-MD-proteínas del resto. Tras el lavado del complejo con agua, se liberan las proteínas retenidas mediante la adición de una disolución de un tensioactivo, como por ejemplo docedilsulfato sódico (SDS) de una oncentración determinada, por ejemplo un 0, 4%, a una temperatura determinada (por ejemplo a 100° C) , durante un tiempo determinado, por ejemplo 10 min. En estas condiciones, es posible romper las interacciones establecidas entre las proteínas y las NPM-MD y, tras el lavado de las mismas, es posible volver a utilizarlas para extraer o purificar proteínas.
Ejemplo 2.- Recuperación de proteínas del suero de queso con NPM-MD
El suero del queso es un subproducto de la industria quesera que contiene proteínas como la a-lactoalbúmina (a-LA) y las p-lactoglobulinas (P-LG (A + B) ) , que presentan un elevado valor biológico y económico. La recuperación de las proteínas contenidas en este subproducto puede realizarse mediante filtración a través de membranas o spray-dr y ing (Nicolás, P.; Ferreira, M. L.; Lassalle, V. Journal of Food Engineering, 2019, 263, 380) . Como alternativa, se han utilizado las NPM-MD, descritas en el ejemplo 1, a pH ácido (pH = 1, 8) y se han probado diferentes relaciones NPM-MD:proteína. La Figura 10 muestra la separación cromatográfica de las principales proteínas del suero (a-LA and p-LG (A + B) ) que no se retienen en las NPM-MD, modificada preferentemente con dendrones de segunda generación con grupos carboxílico o bien modificada preferentemente con dendrones de segunda generación con grupos amonio, cuando se adicionan en relaciones NPM-MD:proteína comprendidas entre 1:1 y 25:1. A una proporción 1:1 NPM-MD:proteína, la a-LA es parcialmente retenida mientras que no se observa la retención de las p-LG (A + B) . La retención de las proteínas aumenta cuando se incrementa la proporción NPM-MD:proteína observando la mayor retención a partir de una proporción de 10:1.
RESULTADOS
Como ejemplo, las NPM-MD, preferentemente con dendrones de segunda generación con grupos carboxílico, se dispersan en agua y se ponen en contacto durante unos pocos minutos (menos de dos minutos) , con las proteínas que se quieren extraer/purificar en condiciones de pH determinado (preferentemente ácido, pH 1, 8) utilizando una proporción NPM-MD:proteína comprendida entre 1:1 y 1:1000, que dependerá del tamaño de las proteínas a extraer/purificar. En la Tabla 1 se indican valores de puntos isoeléctrico y peso molecular de las proteínas modelo (ej. lisozima, mioglobina, concanavalina, seroalbúmina bovina) que sirven de ejemplo, sin descartar otras.
Tabla 1. Pesos moleculares y puntos isoeléctricos de las proteínas empleadas.
Seroalbúmina Proteína Lisozima Mioglobina Concanavalina
bovina
Punto isoeléctrico 11, 35 6, 80 4, 50-5, 50 4, 70
Peso molecular (kDa) 14, 3 17, 8 25, 5 66, 5
Tal y como se muestra en la Figura 6, la mioglobina (6, 80 kDa) y la lisozima (11, 35 kDa) se retenían sobre la NPM-MD, modificada con dendrones de segunda generación carboxilato, cuando se empleaba una proporción NPM-MD:proteína de, al menos, 150:1 mientras que en el caso de la concanavalina (25, 5 kDa) era necesaria una proporción NPM-MD:proteína de 300:1 y en el caso de la seroalbúmina bovina (66, 5 kDa) se necesitaba una proporción mayor (1000:1) .
Respecto a la liberación de proteínas, la Figura 7 muestra los perfiles obtenidos por electroforesis en gel de poliacrilamida con SDS (SDS-PAGE) correspondientes a las proteínas que se liberaban de las NPM-MD tras el tratamiento del complejo formado con las proteínas con los medios y condiciones anteriormente citadas. El NaCl es un reactivo que se suele utilizar para romper interacciones electrostáticas aunque, en los ejemplos de esta invención, no permitió la liberación de las proteínas. Sin embargo, el uso de dodecilsulfato (SDS) a 100° C durante 10 min, permitió romper las interacciones establecidas entre las NPM-MD y las proteínas. Otros medios alquil o aril sulfonatos, o sulfatos pueden emplearse, sin descartar otros.
Finalmente, esta invención muestra que la utilización del sistema NPM-MD obtenido después de liberar la proteína puede volver a ser empleado en la extracción de nuevas biomacromoléculas. La Figura 8 muestra los porcentajes de proteína retenidas en las NPM-MD, modificadas con un dendrón de segunda generación con grupos carboxílico, en tres extracciones consecutivas. Tal y como se observa, las NPM-MD pueden ser empleadas en extracciones sucesivas sin perder su magnetismo ni su capacidad de retención, aspecto que no se observa cuando se emplean NPM no recubiertas con MD.
