Nuevos antibióticos activos frente al Vibrio anguillarum y sus aplicaciones en cultivos de peces, crustáceos, moluscos y otras actividades de acuicultura.
La vibriosis es una de las enfermedades que más pérdidas económicas causa en la acuicultura marina (Toranzo, A.E. y Barja, J.L. 1990. A review of the taxonomy and Seroepizootiology of Vibrio anguillarum, with special referen- ce to aquaculture in northwest of Spain. Dis. Aquat. Org., 9: 73-82. Myhr, E.; Larsen, J.L.; Lillehaug, A.; Gudding, R.; Heum, M. y Hastein, T. 1991. Characterization of Vibrio anguillarum and closely related species isolated ffom farmed fish in Norway. Appl. Environ. Microbiol., 57: 2750-2757). Esta enfermedad está causada por distintas especies bacterianas pertenecientes al género Vibrio, siendo la especie Vibrio anguillarum la responsable principal de epizootias en una gran variedad de peces, crustáceos y moluscos.
En Galicia (NW de España), la vibriosis ha sido a través de los años un problema continuo y limitante en la piscicultura marina. Desde 1985 el Vibrio anguillarum ha sido el principal agente causal de vibriosis en alevines de rodaballo, siendo aislado esporádicamente a partir de salmón y de trucha arcoiris (Toranzo, AJÍ.; Santos, L; Lemos, M.L.; Ledo, A. y Bolinches, J. 1987. Homology of Vibrio anguillarum strains causing epizootics in turbot, salmón and trout reared on the Atlantic Coast of Spain. Aquaculture, 67:41-52. Toranzo, A.E. y Barja, J.L. 1990. A review of the taxonomy and Seroepizootiology of Vibrio anguillarum, with special reference to aquaculture in northwest of Spain. Dis. Aquat. Org., 9: 73-82). Del mismo modo, este Vibrio ha sido el causante de mortalidades en cultivos de peces marinos, moluscos y crustáceos de otras zonas geográficas (Masumura, K.; Yasunobu, H.; Okada, N. y Muroga, K.
1989. Isolation of a Vibrio sp., the causative bacterium of intestinal necrosis of Japanese lounder larvae. Fish Pathol, 24: 135-141.; Baticados, M.C.L.; La Villa-Pitogo, C.R.; Cruz- Lacierda, E.R.; De La Peña, RJí. y NA. Sunaz.
1990. Studies on the Chemical control of luminous bacteria V. harveyi and V. splendiuds isolated from diseased Penaeus monodon larvae and rearing water. Dis. aquat. Org., 9:133-139; Paillard, C. y Maes, P. 1990. Etiologie de la maladie de lánneau brun chez Tapes philippinarum: Pathogénicité dun vibrio sp. C. R. Acad. Sci., Parts 310: 15-20.; Castro, D.; Martínez-Manzanares, E.; Fouz, A.B.; Moriñigo, MA.; Borrego, J.J. y AJÍ. Toranzo. 1992. Characterization of strains related to brown ring disease outbreaks in southwestem Spain. Dis. aquat. Org., 14: 229-236).
A la vista de los problemas descritos anteriormente, que reducen la productividad en las instalaciones de acuicultura, se ha recurrido de modo sistemático a la adición de antibióticos al medio de cultivo. Los principales agentes quimioterápicos hasta ahora usados en acuicultura marina son la oxitetraciclina, quinolonas clásicas (ácido oxolínico, flumequina) y fluoradas (enrofloxacina), y nitrofuranos. El ácido oxolínico y la flumequina han quedado obsoletos por la aparición de cepas resistentes, mientras que la enrofloxacina y el florfenicol se están usando, a pesar de no estar aprobado su uso en peces, ante la posible aparición de cepas resistentes mientras no se encuentran nuevos agentes quimioterápicos eficaces. Por su parte, el uso de los nitrofuranos ha sido prohibido en la acuicultura. En el caso concreto de los cultivos larvarios de vieira (Pecten maximus) y de otros bivalvos susceptibles de acuicultura, se ha comprobado que la utilización de agua de mar filtrada e irradiada con luz ultravioleta, y los cambios frecuentes del agua durante el cultivo, no son medidas suficientemente eficaces, siendo necesaria la utilización de antibióticos para prevenir las mortalidades bacterianas que generalmente aparecen de forma espontánea al cabo de una o dos semanas de cultivo (Alderman, DJ. y Michel, C. 1992. Chemotherapy in aquaculture today. En: Michel, C. y Alderman, D.J. (Eds.), Chemotherapy in Aquaculture: From Theory to Reality. Office International des Epizootics, Paris, pp. 3-24.; Nicolás, J.L.; Corre, S.; Robert, R. y Ansquer, D. 1995. Why do scallop (Pecten maximus) larvae die, when they are reared without antibiotics?. lO4 International Pectinid Workshop. Cork (Ireland). 27 de Abril- 2 de Mayo, 1995.)
Por todo ello, la búsqueda de nuevos antibióticos activos en el medio marino, capaces de proteger los cultivos en instalaciones de acuicultura y no generadores de contaminación, constituyen un tema de gran importancia y para el que son necesarias nuevas soluciones (Nogami, K. Maeda, M. 1992. Bacteria as biocontrol agents for rearing larvea of the crab Portunus trituberculatus. Can. J. Fish. Aquat. Sci., 49: 2373-2376.)
Explicación detallada de la invención
Cepas bacterianas
Se aislaron del agua de cultivo larvario de Pecten maximus 155 cepas bacterianas, que fueron introducidas en placas de Petri con un medio basal agar-marino (peptona bacteriológica 5 g/L, extracto de levadura: 1 g/L, trazos de citrato férrico y agar bacteriológico: 14 g/L) de pH 7,6 caracterizado por su contenido salino, e incubadas a una temperatura de 23°C tanto en cultivos líquidos como en placas.
Estudio de la actividad antibacteriana
Para el estudio de la actividad antibacteriana, de esas cepas frente al Vibrio anguillarum, se emplearon ensayos de antagonismo por el método de discos y el de microplacas.
Para los ensayos de actividad antibacteriana, por el método de los discos, se emplearon discos de papel de filtro estériles, con un diámetro de 5 mm, se impregnaron con el sobrenadante, y fueron depositados sobre placas de agar previamente sembradas en estrías con el Vibrio anguillarum y posteriormente incubados durante 24-48 h a 23°C. La actividad se determinó por el halo de inhibición.
Los ensayos en microplacas en el caldo marino se llevaron a cabo con cultivos puros de las distintas cepas bacterianas y cocultivos de la cepa bacteriana escogida, más la cepa testigo. A cada pocilio de una microplaca de 96 pocilios le fueron añadidos 200 /d, de caldo marino y 10 /d, de sobrenadantes de diferentes cepas. Finalmente, se añadieron a cada pocilio 20 /d, de la cepa testigo (Vibrio anguillarum) diluida a 10 \
Como controles se mantuvieron seis pocilios con 200 pL de caldo marino, tres de ellos inoculados con 10 íL de la cepa bacteriana correspondiente y los otros tres con 20 /d, de la cepa testigo diluida a 10 3. Las microplacas se incubaron durante 24-72 h a una temperatura de 23°C y el grado de inhibición se determinó mediante un lector de Elisa de los distintos pocilios. Los ensayos se hicieron por triplicado.
Localización de la actividad antibacteriana en cultivos puros y cocultivos
Del estudio de la actividad de todas las cepas bacterianas estudiadas en este trabajo se deduce que solamente las dos cepas denominadas CF-20 (Colección Española de Cultivos Tipo CECT 5719) y C-148 (CECT 5718), son capaces de inhibir el crecimiento del Vibrio anguillarum, y por lo tanto seguimos nuestro trabajo solamente sobre estas dos cepas.
En caldo marino (peptona bacteriológica 5 g/L, extracto de levadura: 1 g/L, trazas de citrato férrico y agar bacteriológico: 14 g/L) se llevaron a cabo cultivos puros de las cepas C-148, y CF-20 y cocultivos de C-148 y de CF-20 con V. anguillarum. Después de crecer en agitación, durante 48 h, los cultivos y cocultivos se centrifugaron a 2724 G durante 10 min a 4°C. Una vez separado el sobrenadante del precipitado, las células se resuspendieron en un volumen conocido de agua de mar, se rompieron por ultrasonidos (3x1 min, 20 Khz) y se lavaron tres veces con agua de mar estéril. Los sobrenadantes del caldo y del lavado del pellet y los Usados se ensayaron con los métodos de discos y el método de microplacas para localizar el efecto antagonista.
Identificación bacteriana
La identificación de las cepas bacterianas objeto de estudio se realizó mediante la determinación de sus características fenotípicas, sistemas multiprueba API-20E y API-20NE y genéticas [extracción del DNA genómico, análisis filogenético de las secuencias del rRNA 16S, RAPD y ensayos de hibridación con sondas: ADN/ADN (DOT BLOT)].
Preparación de cultivos bacterianos de CF-20 y C-148
Una colonia de las cepas bacterianas CF-20 o C-148 y otra de V. anguillarum se sembraron y se dejaron crecer en agar marino, se inocularon en cocultivo en matraces de 1.8 L de capacidad con 1200 mL de caldo marino cada uno y se incubaron a 23°C con agitación orbital a 140 r.p.m. durante 24 h.
Al cabo de ese tiempo, cuando el crecimiento bacteriano está en fase exponencial, el caldo se centrifuga a 2724 G a 4°C, y los pellets se sonican y se lavan con agua de mar. La capacidad inhibitoria de los sobrenadantes y Usados se comprobó por el método de los discos, utilizando como controles papeles de filtro impregnados en caldo marino.
Aislamiento e identificación de las sustancias activas
Extracción y aislamiento
Siguiendo el procedimiento de cultivo descrito anteriormente (Preparación de cultivos bacterianos de CF-20 y C- 148), se reúnen los 45 L de sobrenadante del caldo marino procedentes del cocultivo de CF-20 con V. anguillarum, con el sobrenadante de los Usados de los correspondientes peUets, y el volumen total se extrae 3 veces con la mezcla C12CH2: MeOH 75:25. Los extractos se concentraron y se repartieron entre agua y CH2C12 y la fase orgánica concentrada se sometió a separación por cromatografía en columna de gel de sílice eluyendo con mezclas de hexano: AcOEt. Para la localización de la actividad inhibidora al V. anguillarum los procesos de aislamiento y separación, se siguieron por los métodos de discos y microplacas, disolviendo 1 mg de cada fracción en 100 pL de etanol.
Las fracciones activas obtenidas de la columna se cromatograliaron por HPLC en una columna semipreparativa de fase normal (p-porasil; hexano:AcOEt 2:3; flujo: 3 mL/min) proporcionando 3.5 mg de Z54 con un tR de 22 min; 4 mg de Z56 con un tR de 29 min; 3 mg Z57 con un tR de 37 y 5 mg de Z59 con un tR de 44min.
Por su parte, de 45 L de sobrenadante de cultivo de la cepa C-148, se extrajeron y cromatograliaron como antes. Las fracciones activas eluidas de la columna de cromatografía proporcionaron un compuesto impuro que se purificó por UPLC en una columna de fase reversa (p-Bondapak C-18; MeOH:H20 95:5; flujo: 2 mL/min) dando 3 mg de B717 puro activo con un tR de 17 min y una mezcla que sometida a HPLC en una columna semipreparativa de fase normal (p-porasil; hexano-AcOEt 2:3; flujo: 3 mL/min) proporcionó importantes compuestos activos frente al Vibrio anguillarum 4 mg de Z54; 3.5 mg de Z56; 3 mg de Z57 y 2.5 mg de Z59. Todos los compuestos mostraron actividad óptica (Tabla 1) y se identificaron como dicetopiperacinas.
La elucidación estructural de estos compuestos se llevó a cabo utilizando técnicas de RMN (experimentos 13C, 'H y DEPT), de masas (e.i.; (+) FAB; baja y alta resolución) principalmente, así como por comparación directa con muestras auténticas obtenidas por síntesis. En la Tabla 1 se muestran los datos espectroscópicos más relevantes (13C,
`HyEM).
TABLA 1
Tiempos de retención fR (min), {a}D y fragmentos en el espectrometría de masas de los antibióticos
| Antibióticos aislados | tR (min) | {a}D (EtOH) | m/z (urna) |
| Z54(3.5 mg) | | +88.6° | 210, 194, 154, 125, 86 y 70 |
| Z56(4 mg) | | +193.1° | 210, 154, 125, 86 y 70 |
| Z57(3 mg) | | +76.5° | 196, 154, 125, 91 y 70 |
| Z59(5 mg) | | -70.3° | 244, 215, 194, 153, 125, 91 y 70 |
| B717(3 mg) | | +7.1° | 260, 185, 170, 141, 120, 91 y 60 |
Síntesis de dicetopiperacinas
Con el objeto de disponer de muestras auténticas de las dicetopiperacinas para comparación directa con las naturales, para ensayos de actividad antibiótica y para la determinación de las características estructurales ligadas a esa actividad, se prepararon por procedimientos conocidos (descritos posteriormente: Preparación de dicetopiperacinas LL y DD) y a partir de los or-aminoácidos correspondientes, una amplia serie de dicetopiperacinas de las series LL y DD que luego se epimerizaron para obtener las correspondientes dicetopiperacinas LD y DL.
Preparación de dicetopiperacinas LL y DD
Se prepararon primero los dipéptidos protegidos como BOC (butiloxicarbonilo) y metil éster que se ciclaron por calefacción en ácido fórmico/BuOH/Tolueno. De este modo se prepararon las dicetopiperacinas LL y DD de la Tabla 2, excepto la B717 que se obtuvo por acoplamiento entre Cbz-(D)-trans-4-hidroxi-(D)-prolina con (D)- fenilalanina metil éster seguido de N-desprotección por hidrogenación catalítica y ciclación, para dar el compuesto B717.
Preparación de dicetopiperacinas LD y DL por epimerización
Se utilizó el procedimiento descrito por Ott et al. (Ott. H; Frey, A. J.; Hollinan, A. 1963. Tetrahedron 19, 1675. y Adamczeski et al. (Adamczeski, M.; Reed, A.R. y P. Crews. 1995. Knew and Known Diketopiperazines from the Caribbean Sponge, Galxy CF. podatypa. Journal of Natural Product, 58(2): 201-208.), con ligeras modificaciones tal y como se describe a continuación:
En un vial pequeño de vidrio se disuelven 20 mg de dicetopiperacina DD o LL en 0,3 mL de hidróxido de sodio (0.5 mL de 0.5 N de NaOH en H20:MeOH, 1:1) y se mantiene durante 15 min a temperatura ambiente. Se añaden algunas gotas de ácido clorhídrico al 15% y se deja toda la noche. La solución se concentra a vacío y el residuo se extrae con cloruro de metileno, se concentra el disolvente y se cristaliza con acetato etilo.
Concentración mínima inhibidora (CMI) de los antibióticos aislados
La concentración mínima inhibidora (CMI) de las sustancias activas aisladas Z54, Z56, Z57, Z59 y B717 se determinó mediante el método de dilución de agar descrita en la guía NCCLS (NCCLS, 1997 Performance Standards for Antimicrobial Disk and Dilution Susceptibility Tests for Bacteria isolated from Animáis; Tentative Standard. NCCLS Document M31-T.), con ligeras modificaciones en la composición del medio, tiempo de incubación y la temperatura. Se prepararon disoluciones de las sustancias activas a distintas concentraciones (0.005; 0,05; 0,1; 0,2; 0,3; 0,4; 0,5; 0,7; 0,8 y 5 pg/mL), y suspensiones de V anguillarum a distintas diluciones (de 10 a 106 células/mL). A continuación se añaden distintas concentraciones de las sustancias activas sobre placas de Petri previamente sembradas con V. anguillarum y se miden los halos de inhibición al cabo de 24-48 horas.
Actividad in vivo de las sustancias activas
También se llevaron a cabo estudios in vivo del efecto antibiótico de estas sustancias aisladas Z54, Z56, Z57, Z59 y B717 en diversos cultivos de interés en acuicultura como los de Dicentrarchus labrax, Sparus aurata, Psetta máxima, Maja squiado, Ruditapes decussatus y Ostrea edulis. Se describen a continuación los efectuados con Ruditapes decussatus y Ostrea edulis que son representativos.
Cultivos larvarios
Los cultivos larvarios de Ruditapes decussatus y Ostrea edulis se mantuvieron en el laboratorio a una temperatura controlada de 20°C, renovándose el agua y analizándose la flora bacteriana en general y el V. anguillarum cada dos días. Se llevaron a cabo dos tipos de experimentos: El primero en tubos de 100 mL para hacer una determinación aproximada de la dosis de cada una de las sustancias activas que proporciona el mejor crecimiento y/o supervivencia
de las larvas con relación al control, y el segundo en tanques de 70 L para confirmar la actividad y dosis más adecuadas, y acercarse a las condiciones de explotación en acuicultura.
Experimento 1
Para estos experimentos se utilizaron tubos pyrex de 100 mL, conteniendo 90 mL de agua de mar, filtrada a 1 //m y una densidad larvaria de 5-7 larvas.mL"1 para Ruditapes decussatus y de 1-2 larvas para Ostrea edulis. La edad de las larvas al inicio de los experimentos fue de 3 a 5 días. Los cultivos se mantuvieron con aireación a lo largo de todo el experimento, y se alimentaron con una mezcla de las microalgas Isochrysis galbana (T-iso), Chaetoceros calcitrans, Pavlova lutheri y Tetraselmis suecica (20:10:20:5 células.yuL-1, respectivamente).
A estos cultivos se añadieron distintas concentraciones (0.005; 0.05; 0.1; 0.2; 0.3; 0.4; 0.5; 0.7; 0.8 y 5 jug/mL) de cada una de las sustancias activas, y se determinó la dosis de cada sustancia, que permite el mejor crecimiento y/o supervivencia de las larvas, medido a los 22 días de iniciado el cultivo.
Experimento 2
Una vez determinada la dosis adecuada de cada sustancia, según el método descrito en el experimento 1, se comprobó el efecto de las sustancias activas en cultivos larvarios contenidos en tanques de 70 L, manteniendo las mismas condiciones experimentales del experimento 1, excepto que el contaje de las larvas se realizó a los 11 días de la adición de las sustancias.
Mortalidad, crecimiento larvario y flora bacteriana
Para la determinación de la mortalidad y del crecimiento larvario después de la adición de las sustancias antibióticas aisladas (Z54, Z56, Z57, Z59 y B717), las larvas procedentes de los experimentos anteriores fueron recogidas en tamices, y se suspendieron en un pequeño volumen de agua de mar, del que se tomaron tres alícuotas de 100 pL que fueron examinadas para la estimación del número medio de larvas y el cálculo de la supervivencia.
Para analizar la evolución de los vibrios y flora bacteriana en general, tras la adición de las sustancias antibióticas, se tomaron muestras de 1 mL de cultivo que fueron diluidas con agua de mar estéril hasta una dilución de 10"4. Alícuotas de 40 mL de estas diluciones se sembraron por duplicado en agar marino Z2216 (Difeo) y agar Tiosulfato- Citrato-Bilis-Sacarosa (TCBS) (Oxoid). Las placas de cultivo de agar marino se incubaron a 23°C, durante 2-4 días, y las de TCBS durante 2 días. Al cabo de este tiempo se calcularon las unidades viables (ULC: Unidades Lormadoras de Colonias) multiplicando la media del número de colonias por el inverso del factor de dilución.
Del estudio de la actividad de todas las cepas bacterianas presentes en los cultivos de vieira, dorada y ostra plana se deduce que solamente las dos cepas denominadas CL-20 y C-148 son capaces de inhibir el crecimiento del Vibrio an- guillarum. Además, se comprueba que esa actividad sólo se produce cuando cualquiera de esas dos cepas bacterianas está en contacto directo con el V. anguillarum. Cuando se llevaron a cabo ensayos separados para el pellet y el sobrenadante de cultivos de CL-20 y C-148 los resultados de actividad indican claramente que las sustancias antibióticas están presentes en el sobrenadante y en el pellet de las células.
El estudio de sus características fenotípicas, sistemas multiprueba API-20E y API-20NE y genéticas, identifican a las cepas CL-20 como Roseobacter galleaciensis sp y C-148 como Roseobacter sp.
Cultivos de las cepas CF-20 y C-148
Con el objeto de aislar e identificar las sustancias activas frente al Vibrio anguillarum, y obtenerlas en cantidad suficiente, se llevaron a cabo en primer lugar, una serie de cultivos en pequeña escala para determinar las mejores condiciones experimentales para el cultivo de las cepas activas y la producción de los antibióticos, así como el momento en que la concentración es máxima. De los resultados, se dedujo que el cultivo en caldo marino (peptona: 5 g/L, extracto de levadura: 1 g/L y citratos férricos) a 23°C, con agitación orbital (140 r.p.m) durante 24 horas y en cocultivo de la cepa CL-20 o C-148 y el Vibrio anguillarum eran las condiciones más favorables.
Con esa información se establecieron cocultivos de las cepas CL-20 y C-148 con el Vibrio anguillarum en matraces de 1.8 L que fueron utilizados para la extracción de las sustancias activas frente al Vibrio anguillarum a partir del sobrenadante del caldo y de los lisados de las células en los que previamente habíamos localizado la actividad.
Aislamiento, estructura y síntesis de los antibióticos
Aislamiento
Los procesos de extracción, separación y aislamiento, se siguieron por medio de los test de actividad en discos y microplacas. Así, por extracción selectiva del caldo y los lisados de los cocultivos de CL-20 y C-148 se obtuvo un extracto activo frente al Vibrio anguillarum cuya fracción soluble en diclorometano, fue sometida a separación cromatográfica en silica gel que proporcionó varias fracciones activas de las que finalmente se aislaron por HPLC cantidades de 3-5 mg de los componentes activos frente al Vibrio anguillarum puros.
De la cepa bacteriana CF-20 se obtuvieron los cuatro compuestos: Z54, Z56, Z57 y Z59, mientras que los extractos de la cepa C-148 proporcionaron además de esos mismos cuatro componentes, en cantidades similares, un nuevo componente activo B717.
El estudio estructural de estos compuestos llevado a cabo por métodos espectroscópicos (RMN y EM principalmente), muestran para Z54, Z56, Z57, Z59 la presencia de señales en el RMN de protón y carbono características de dicetopiperacinas que contienen el anillo de Pro fusionado con Leu, lie, Val y Phe. Los espectros de masas por impacto electrónico y FAB de baja y alta resolución confirman esas estructuras. Por su parte, el compuesto B717, presenta unas características espectroscópicas similares a las de Z59 pero contiene 4-hidroxiprolina en lugar de prolina. Los datos espectroscópicos mencionados indican además que los dos centros asimétricos de las cinco dicetopiperacinas presentan la misma configuración, (LL o DD) y son coincidentes con los descritos para ciclo(L)-prolina-(L)-Leucina, ciclo(L)-prolina-(L)-Isoleucina , ciclo(L)- prolina-(L)- valina , ciclo(L)-prolina-(L)-fenilalanina , y ciclo(L)-trans-4- hidroxiprolinil- (L)- fenilalanina (Pickenhagen, W.; Dietrich, P.; Polonsky, J. Nouaille, F. y Lederer, E. 1975. Identification of the Bitter Principal of Cocoa. Helvética ChimicaActa, 58, Fase. 4(115): 1078-1086. Paul e. Young, Vicent Madison, and Elkan R. Blout. Cyclic Peptides. 15 Lanthanide-Assisted 13C and1H NMR Analysis of Preferred Si- de-Chain Rotamers in Proline-Containing Cyclic Dipeptides. Journal of the American Chemical Society /98:17/ August 18,1976.5365- 5371. Young, P.E.; Madison, V. y Blout, E.R. 1976. Cyclic Peptides. 15 Lanthanide-Assisted 13C and H NMR Analysis of Preferred Side-Chain Rotamers in Proline-Containing Cyclic Dipeptides. JACS, 98: 5365-5371. Schmitz, F.J.; VanderaH, D.J.; Hollenbeak, K.H.; Enwall, C.E.L. y Gopichand, Y. 1983. Me- tabolites from the Marine Sponge Tedania ignis. A new Atisanediol and Several known Diketopiperazines. J. Org. Chem., 48: 3941-3945. Adamczeski, M.; Reed, A.R. y P. Crews. 1995. Knew and Known Diketopiperazines from the Caribbean Sponge, Galxy CF. podatypa. Journal of Natural Product, 58(2): 201-208. Jayatilake, G.S.; Thornton, M.P.; Leonard, A.C.; Grimwade, J.E. y Baker, B.J. 1996. Metabolites from an Antarctic Sponge-Associated Bacte- rium, Pseudomonas aeruginosa. J. Nat. Prod., 59: 293-296. Trigos, A.; Reyna, S.; Galindo, G. y Ramos, J.M. 1996. Diketopiperazines from cultures of Fungus Pestalotia palmarum. Natural Product letters, 8: 199-205. Ginz, M. y En- gelhardt, U.H. 2000. Identification of Proline-BasedDiketopiperazines in Roasted Coffee. J. Agrie. Food. Chem., 48: 3528-3532.), pero los valores de poder rotatorio de nuestros compuestos indican que se trata de los correspondientes enantiómeros.
Síntesis de antibióticos aislados
Se prepararon, utilizando procedimientos comunes (descritos anteriormente en Síntesis de dicetopiperacinas) a partir de alfa aminoácidos, las correspondientes dicetopiperacinas con estereoquímica LL y DD. Por epimerización de las anteriores se obtuvieron las correspondientes dicetopiperacinas con estereoquímica LD y DL. La comparación directa demostró que las naturales son los enantiómeros DD. Así pues Z54 es ciclo(D)-prolina-(D)-Isoleucina, Z56 es ciclo(D)-prolina-(D)-Leucina, Z57 es ciclo(D)-prolina-(D)-valina, Z59 es ciclo(D)-prolina-(D)-fenilalanina, y B717 es ciclo(D)-trans-4-hidroxiprolinil- (D)- fenilalanina.
Estructuras de los compuestos aislados
O
**(Ver fórmula)** **(Ver fórmula)** **(Ver fórmula)**
Ciclo(D)-trans-4-hidroxiprolinil-D-fenilalanina
B717 ciclo(D)-pro-(D)-Ile: Z56
En las tablas 1, 3 y 4 se muestran los datos de RMN de protón, carbono y de E. de masas de los antibióticos aislados de las cepas bacterianas.
Actividad antibiótica de las dicetopiperacims naturales y sintéticas
La síntesis de dicetopiperacinas con estereoquímica diversa, a partir de alfa aminoácidos permitió disponer de una amplia colección de compuestos que fueron sometidos a ensayos de su actividad antibiótica junto con las muestras naturales (Tabla 2).
Todos los antibióticos naturales (Z54, Z56, Z57, Z59 y B717) aislados de ambas cepas bacterianas CF-20 y C-148 han mostrado una fuerte actividad frente a los Vibrios y la flora bacteriana en general, que justifica el efecto encontrado en los cultivos larvarios iniciales. Los ensayos in vitro muestran una actividad (0,03 < CMI < 0,07 Tabla 2), comparable o superior a la de algunos de los antibióticos utilizados actualmente en acuicultura como la oxitetraciclina (CMI: 0.5
jUg.mL-1).
El estudio sistemático de la actividad antibiótica de la colección de dicetopiperacinas sintetizadas y de las naturales, muestra que la actividad esta ligada esencialmente a la estereoquímica de compuesto y que en general, los isómeros DD son unas 2 veces más activos que los LD y DL, mientras que los isómeros LL son prácticamente inactivos.
TABLA 2
Concentración mínima inhibitoria (CMI; pg.mL^1) frente al V. Ansuillarum de una selección de dicetopiperacinas
con estereoquímica DD, LD y DL
| Sustancias ensayadas | CMI Oug/ml) |
| ciclo(D)-Pro-(D)-Phe: Z59 | 0,03 |
| ciclo(D)-Pro-(D)-Val: Z57 | 0,05 |
| ciclo(D)-Pro-(D)-Ile: Z56 | 0,05 |
| ciclo(D)-Pro-(D)-Leu: Z54 | 0,04 |
| ciclo(D)-trans-4-OH-Pro-(D)-Phe:B717 | 0,07 |
| ciclo(D)-Val-(D)-Leu | 0,05 |
| ciclo(D)-Pro-(L)-Phe | 0,1 |
| ciclo(D)-Pro-(L)-Val | 0,11 |
| ciclo(D)-Pro-(L)-Ile | 0,12 |
| ciclo(D)-Pro-(L)-Leu | 0,13 |
| ciclo(D)-Val-(L)-Leu | 0,12 |
| ciclo(D)-Val-(L)-Leu | 0,11 |
| ciclo(L)-Pro-(D)-Phe | 0,13 |
| ciclo(L)-Pro-(D)-Val | 0,14 |
| ciclo(L)-Pro-(D)-Ile | 0,11 |
| ciclo(L)-Pro-(D)-Leu | 0,12 |
| ciclo(L)-Leu-(D)-Gly | 0,11 |
| ciclo(L)-Phe-(D)-Ser | 0,13 |
| ciclo(L)-Pro-(D)-Gly | 0,12 |
| ciclo(L)-Val-(D)-Leu | 0,11 |
| ciclo(L)-Pro-(D)-Phe | 0,13 |
| ciclo(L)-Val-(D)-Leu | 0,14 |
Cuando las sustancias antibióticas activas fueron ensayadas in vivo, pudo comprobarse que esa actividad se mantiene y que producen una clara reducción de la flora bacteriana total y de la de los Vibrios y que mejoran la supervivencia de las especies cultivadas en el tanque. A modo de ejemplo, se muestra en el Gráfico 3 el resultado de los ensayos in vivo con larvas del molusco Ruditapes decussatus, de las dicetopiperacinas naturales aisladas de las cepas CF-20 y C-148. En estos experimentos, se observa que la supervivencia de las larvas aumenta en valores que van desde el 12 al 33%, siendo el compuesto más activo el Z59 y el menos activo B717, no habiendo diferencias esenciales en la actividad de los otros que se mantienen en tomo al 20%.
La elevada mortalidad en los tanques de control muestra claramente que la flora bacteriana es la principal causa de mortalidad de las larvas tal y como indican los valores obtenidos para UFC y los cambios observados en la flora bacteriana en general y en los Vibrio.
GRÁFICO 3
Ensayos de actividad in vivo frente a Ruditaves decussatus
Ensayos in vivo
ro
o
c
>
O
O.
tí)
**(Ver fórmula)**
supervivencia
Z57 Z59 Z54 Z56 B717 (0,5) (0,5) (0,5) (0,5) (0,5)
sustancias añadidas (pg.mL'1)
En realidad, la actividad antibiótica de estas sustancias es tan intensa que en cultivos tratados con los antibióticos a concentraciones tan bajas como 0,5 ppm., los Vibrios se reducen en más del 70%. El efecto protector que la adición de estas sustancias tiene sobre los cultivos larvarios se pone claramente de manifiesto por el hecho de que las larvas de los cultivos no tratados con los antibióticos no sobrevivieron más de cuatro días.
En contraste con lo descrito para antibióticos comerciales como cloramfenicol, florfenicol, flumequina y trimeto- prim/sulfadiazina, nuestros ensayos in vivo muestran que las dicetopiperacinas activas no pierden su actividad por los cambios de salinidad y temperatura (Christian. M. y Guillaume. B. 2001. Minimal inhibitory concentration metho- dology in aquaculture : the temperature effect. Aquaculture 196, 311-318.) del medio, asociados al paso de ensayos in
vitro a in vivo.
Procedimiento para la utilización de los antibióticos Tratamiento de moluscos
Una solución conteniendo el antibiótico o mezcla de los antibióticos descritos, naturales y sintéticos, se añade al tanque al inicio del cultivo larvario de manera que la concentración final sea de 0.5-1 pg/mL. Al cabo de dos días se renueva el agua del tanque y se repone la solución antibiótica restableciéndose la concentración inicial. El proceso de renovación del agua y adición de los antibióticos se repite hasta un total de cinco veces. Al cabo de ese tiempo, (10 días) se da por finalizado el tratamiento.
Tratamiento de peces y crustáceos
1) Para cultivos con circulación de agua en sistema cerrado, se disminuye el agua del tanque al mínimo nivel que no afecte a las especies cultivadas, y se añade el antibiótico hasta alcanzar la concentración final antes indicada, dejándolo actuar durante 30 min con agitación, y al cabo de ese tiempo se restaura el nivel normal de agua. Este tratamiento se repite cada dos días hasta un total de entre 4-5 veces (8-10 días de tratamiento).
2) Para cultivos en los que el agua circule en un sistema abierto, se para el suministro de agua durante 30 min, se baja el nivel hasta el mínimo que no afecte a las especies cultivadas y se añade el antibiótico como en el caso anterior. Pasados los 30 min. se restablece la circulación de agua normal. Este proceso se repite cada dos días hasta un total de 4-5 veces (8-10 días de tratamiento).
TABLA 3
Datos 13C-RMN (CDCl3, 300 MHz) de los antibióticos aislados de las cepas bacterianas: CF-20 y C-148
| Compuestos | Z59 | Z57 | Z56 | Z54 | B717 |
| | 169.4 | 170.2 | 170.1 | 170.3 | 169.76 |
| | 45.2 | 45.05 | 45.45 | 45.09 | 54.32 |
| | 22.2 | 22.2 | 22.7 | 22.63 | 68.01 |
| | 28.3 | 28.4 | 28.3 | 28.02 | 37.5 |
| | 58.9 | 58.7 | 58.9 | 59.14 | 56.04 |
| | 164.9 | 164.9 | 165.06 | 166.44 | 165.11 |
| | 56.1 | 60.3 | 60.4 | 53.29 | 54.3 |
| | 36.6 | 28.4 | 35.3 | 38.29 | 36.5 |
| | | 19.03 | 24.5 | 24.43 | |
| | | 15.9 | 12.06 | 23.19 | |
| | | | 15.7 | 21.18 | |
| Ar | | | | | |
| 1 | 135.8 | | | | 135.70 |
| 2 | 128.9 | | | | 129.13 |
| 3 | 127.3 | | | | 129.08 |
| 4 | 129.1 | | | | 127.46 |
TABLA 4
Datos1H-RMN (CDCl3, 300 MHz) de los antibióticos aislados de las cepas bacterianas: CF-20 y C-148
| H | Z59 | Z57 | Z56 |
| | 3.7-3.6, 1H, m | 3.55, 1H, dt | 3.6-3.5, 2H, m |
| | 3.6-3.5, 1H, m | 3.63, 1H, m | |
| | 1.9-1.8, 2H, m | 2.02-1.99, 1H,m | 2.0-1.9, 1H,m; |
| | | 1.93-1.88, 1H,m | 1.9-1.8, 1H,m |
| | 2.4-2.3, 1H, m | 2.4-2.3, 1H, m; | 2.3-2.2, 1H, m; |
| | 2.1-2.0, 1H, m | 2.1-2.0, 1H, m | 2.1-2.0, 1H,m |
| | 4.08, 1H, t | 4.08, 1H, dt | 4.07, 1H, t |
| N-H | 5.60, 1H, br s | 5.72, 1H, dd | 5.99, 1H, br s |
| | 4.27, 1H, dd | 3.94, 1H, br s | 3.96, 1H, br s |
| | 3.6-3.5, 1H, m 2.77,1H, dd | 2.64, 1H, m | 2.4-2.3, 1H, m |
| | | 0.91, 3H, d | 1.5-1.4, 1H,m; 1.3-1.1, 1H,m |
| | | 1.06, 3H, d | 0.92, 3H, t |
| | | | 1.05,3H, d |
| Ar | 7.4-7.2, 5H | | |
TABLA 4 (Continuación)
| H | Z54 | B717 |
| | 3.6-3.5, 2H, m | 3.85 (d) |
| | 1.94-1.86, 1H, m; 2.02-1.99, 1H,m | 4.7 (t, J = 4.1 Hz) |
| | 2.13, 1H,m | 2.3 (ddd, J = 4.1 Hz) |
| | 4.12, 1H, t | 4.65 (dd,J= 11.1Hz) |
| N-H | 5.91, 1H,brs | 6.1 (S) |
| | 4.01, 1H, dd | 4.45 (dd, J= 10.7 Hz) |
| | 2.01, 1H, ddd 1.76-1.69, 1H, m | 2.85 (dd) |
| | 1.7-1.69, 1H, m | |
| | 0.94, 3H, d | |
| | 1.00,3H,d | |
| Ar | | 7.35 (br, m) |
